用于研究HUVEC的iPSC多能性和毛細(xì)血管網(wǎng)絡(luò)形成的
高級體外3D模型
Josefin Blell,理學(xué)碩士,Shubhankar Nath,博士,
Christen Boyer,博士和 Itedale Namro Redwan,博士
CELLINK,瑞典哥德堡
將人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVECs)和人真皮成纖維細(xì)胞(HDFs)共培養(yǎng)和誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(iPSCs)單培養(yǎng) ??分別包埋于選定的生物材料中7d。利用免疫熒光成像將這些三維培養(yǎng)系統(tǒng)的細(xì)胞標(biāo)記與二維培養(yǎng)進行了比較,并證明了使用細(xì)胞相關(guān)材料的重要性。HUVEC與HDF共培養(yǎng)的時間是獲得復(fù)雜結(jié)構(gòu)的重要因素。在3D ?????中延長培養(yǎng)時間導(dǎo)致觀察到促血管生成結(jié)構(gòu),這一現(xiàn)象只在3D中觀察到。與2D相比,iPSCs在3D培養(yǎng)時形成團簇,細(xì)胞組裝重塑,形成環(huán)形結(jié)構(gòu),并表達(dá)多能性標(biāo)記OCT4和NANOG。iPSCs可以在3D培養(yǎng)中保持其 ??多能性,這使得科學(xué)家可以設(shè)計更先進的實驗,在這種實驗中,干細(xì)胞可以在3D嵌入后進行分化。
由于整個 3D 矩陣中細(xì)胞自組裝和重組的差異,3D 生物打印和共培養(yǎng)類器官最近受到了廣泛關(guān)注。 單一培養(yǎng)類器官傾向于在 3D 中聚集以最大化粘附并最小化能量,而共培養(yǎng)則根據(jù)細(xì)胞間粘附的差異進行重組
(Foty,2005 年;Napolitano,2007 年)。 一般來說,不同的細(xì)胞類型在細(xì)胞重組過程中也會相互顯著影響。 例如,單獨的內(nèi)皮祖細(xì)胞不會形成血管組織,但當(dāng)與人真皮成纖維細(xì)胞(HDF) 或平滑肌細(xì)胞類型共培養(yǎng)時,血管內(nèi)皮管可以在多孔生物材料或生物墨水中形成 (Unger, 2007)。 一項使用人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC) 的研究表明,這些細(xì)胞在沒有成纖維細(xì)胞的情況下無法形成內(nèi)皮細(xì)胞腔,這凸顯了共培養(yǎng)系統(tǒng)的重要性(Newman,2011)。
在研究過程中,對HUVEC培養(yǎng)的相關(guān)標(biāo)記進行了分析。分化簇31(CD31)是一種內(nèi)皮細(xì)胞特異性標(biāo)記物,用于二維和三維培養(yǎng)中監(jiān)測內(nèi)皮細(xì)胞的分化、自組裝和血管生成。CD31在HUVECs表面表達(dá),并已知在類有機分子內(nèi)自組織(Wu,2004)。occludens-1(ZO-1)是一種細(xì)胞質(zhì)蛋白,作為支架分子,是上皮細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞 ??緊密連接的組成部分。ZO-1氨基末端能與claudins和α-catenin/cadherins結(jié)合,羧基末端能與肌動蛋白細(xì)胞骨架相互作用(Itoh,1997)。表明在上皮細(xì)胞中,ZO-1是三維形成管腔所必需的。在排列的HUVEC三維培養(yǎng)中,ZO-1在緊密連接的功能性內(nèi)皮形成中發(fā)揮重要作用(Kang,2018)。
多能性標(biāo)記OCT4、SOX2和NANOG在維持胚胎干細(xì)胞和誘導(dǎo)多能性干細(xì)胞(iPSCs)的穩(wěn)定中起著關(guān)鍵作用。證據(jù)表明,在分化和發(fā)育過程中,它們表達(dá)模式的改變控制著細(xì)胞的命運(Wang,2012)。例如,OCT4 調(diào)節(jié)BMP4通路并與之相互作用,以指定不同的發(fā)育命運。高水平的OCT4能在缺乏BMP4的情況下自我更新,但在存在BMP4的情況下指定中胚層。低水平的OCT4在沒有BMP4的情況下誘導(dǎo)胚胎外胚層分化,但在 ??有BMP4的情況下明確胚胎外譜系。SOX2抑制中胚層分化, 而NANOG抑制胚胎外胚層分化(Rizzino, 2016)。這表明了在3D基質(zhì)中嵌入iPSCs或在2D中培養(yǎng)時保持這些多能性標(biāo)記的重要性。
將HUVECs培養(yǎng)在大血管內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)基中,添加生長補品(Cellworks,ZHM-2953),并添加0.1%慶大霉素/ 兩性霉素抗生素(Gibco,R-015-10)。新生兒HDF在成纖維細(xì)胞生長培養(yǎng)基(促進細(xì)胞,C-23010)中培養(yǎng)。iPSCs按Celllatis’s培養(yǎng)方案培養(yǎng)。iPSCs在Synthemax II-SC基質(zhì)(Corning,3535)涂層上培養(yǎng),并用Versene溶液(Gibco,15040-033)分離。培養(yǎng)基為Cellartis DEF-CS 500無Xeno培養(yǎng)基(Takara Bio,Y30045),添加添加劑(Takara Bio,Y30042)和1%慶大霉素/兩性霉素(Gibco,R-015-10)。
對于HUVEC-HDF生物打印,將GFP標(biāo)記的HUVEC細(xì)胞以1:1的比例與HDFs混合,并與bioink、Matrigel Matrix(Corning,354234)或GelMA(CELLINK,IK305102)混合,以200萬細(xì)胞/ml的比例添加纖維連接蛋白, bioink與細(xì)胞的比例為9:1。bioink和細(xì)胞在兩個注射器之間混合,然后通過連接的22g噴嘴(CELLINK, NZ4220005001)分配。Gelma基樣品在3 cm處光交聯(lián)15秒,Matrigel基樣品在37℃下熱交聯(lián)20分鐘后加入介質(zhì)。在每周更換3次的HUVECs培養(yǎng)基中培養(yǎng)。
對于iPSCs生物打印,細(xì)胞以100萬個細(xì)胞/ml的比例在兩個注射器之間以10:1的比例bioink(Matrigel或
GelMA?, 補 充 層 粘 連 蛋 白 521(GelMA+LN521)) 與 細(xì) 胞 (?V/V?)?混 合 , 并 通 過 20g?噴 嘴
(CELLINK,NZ4200005001)分配。GelMA光交聯(lián)5~10秒,Matrigel熱交聯(lián)。培養(yǎng)基每天更換。
一般情況下,所有樣品在未經(jīng)處理的96孔板(VWR,7342781)中以液滴形式生物打印,使用
BIO X(CELLINK,D16110020717)和在100微升相應(yīng)生長培養(yǎng)基存在下培養(yǎng)所有的光交聯(lián)都是在405nm的光模塊上進行的。2D細(xì)胞在腔室細(xì)胞上培養(yǎng)
培養(yǎng)幻燈片(Falcon,354108)。所有培養(yǎng)物均保持在37°C和5%CO2下。分別于3d和2d培養(yǎng)5~14d和3~4d, 用免疫組織化學(xué)(IHC)分析不同標(biāo)記物的表達(dá)。
用4%多聚甲醛(CaCl2 50 mM)固定5~6小時,然后用乙醇和二甲苯脫水。在用切片機切片至5μm厚之前,用石蠟浸潤和包埋這些結(jié)構(gòu)。切片在顯微鏡載玻片上固定,并在二甲苯和乙醇中分離。用抗原回收緩 ??沖液煮沸制備抗體染色樣品,然后用封閉液處理。2D細(xì)胞固定1~3h,用0.5%Triton-X100滲透,用封閉液 ??處理。將一抗溶液加入所有玻片中,在4℃下孵育過夜。切片經(jīng)PBS洗滌后,在室溫下用二次抗體處理1h。細(xì)胞核用NucBlue固定細(xì)胞ReadyProbes試劑(Invitrogen,R37606)反染。將蓋片安裝在載玻片上,并附上氟蒙特-G(Invitrogen,00-4958-02)。用熒光共聚焦顯微鏡(ZEISS LSM710 NLO)在相同的采集參數(shù)下分析次級抗體的定位。
HUVEC-HDF共培養(yǎng):為了確定不同基質(zhì)對HUVECs和HDF共培養(yǎng)的影響,首先用熒光顯微鏡觀察其形態(tài)差異。生長在Matrigel和GelMA纖維連接蛋白中的細(xì)胞形成致密的網(wǎng)絡(luò),表現(xiàn)為細(xì)長的表型,而2D細(xì)胞表現(xiàn)為 ??細(xì)長較少而圓形較多的形態(tài)(圖1)。此外,二維圖像顯示GFP-HUVECs在少數(shù)上皮細(xì)胞中呈簇狀分布。
圖1.GFP 標(biāo)記的 HUVEC(綠色)在 2D 單層(第 3 天)和Matrigel(第 7 天)和 GelMA 纖連蛋白(第 14 天)上的 3D 培養(yǎng)中與 HDF 共培養(yǎng)。 比例尺= 100 μm。
ZO-1染色:除了細(xì)胞形態(tài)外,緊密連接在內(nèi)皮屏障功能的調(diào)節(jié)中起著至關(guān)重要的作用。為此,對緊密連接相關(guān)蛋白ZO-1進行免疫染色,分析其在2D和不同3D基質(zhì)中的細(xì)胞分布。如圖2所示, 在第15 天,在GelMA纖維連接蛋白Sam-ples 中檢測到高水平的ZO-1。在GelMA 纖維-果膠樣品中也觀察到幾個芽, 表明這些細(xì)胞具有形成毛細(xì)血管樣結(jié)構(gòu)的能力。有趣的是,ZO-1二維染色不僅局限于HUVECs , 也可在HDFs中檢測到, 提示一個含有合適ECM成分的三維環(huán)境對維持不同細(xì)胞系蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)和時空表達(dá)是必要的。
圖2.GFP-HUVEC和HDF共培養(yǎng)2d(第3天)和Matrigel
(第8天)和GelMA纖維連接蛋白(第15天)分別用ZO- 1(紅色)和DAPI(藍(lán)色)染色。比例尺=100μm。
CD31染色:為進一步鑒定共培養(yǎng)物,對特異性內(nèi)皮標(biāo)記物CD31進行免疫熒光染色。毫不奇怪,CD31的表達(dá)僅限于2D 和 GelMA 纖 維 連 接 蛋 白 第 15 天 的HUVECs,這可以通過重疊表達(dá)GFP和CD31/DAPI 的HUVECs 圖像面板顯示(圖3)。不幸的是,在atrigel第8天培養(yǎng)中檢測到非常低水平的CD31,這可以由GFP信號所示的視野中HUVECs細(xì)胞的非常低數(shù)量或缺乏來解釋(圖3)。
圖3.GFP-HUVEC與HDF共培養(yǎng)2d(3d)、3d、3d,CD31(紅)、DAPI(藍(lán))染色,Matrigel(8d)、GelMA纖維連 接蛋白(15d)染色。比例尺=100μm。
圖4.在3DMatrigel或Gelma+LN521中對培養(yǎng)4d后的iPSCs進行2d和7d的亮場圖像。比例尺=100μm。
接下來,用亮場顯微鏡觀察生長在2D和3D簇中的iPSC細(xì)胞的形態(tài),如圖4所示。在Matrigel和Gelma+LN521 中均觀察到不同大小的球體。此外,還對三個多能性標(biāo)記OCT4、NANOG和SOX2的表達(dá)進行了評估。
多能性標(biāo)記物 OCT4 在所有條件下都有不同程度的表達(dá),如圖 5(上圖)所示。在 2D 中,在細(xì)胞簇的周邊觀察到最高的信號強度。而在 Matrigel 中,信號強度均勻分布在整個樣品上。對于圖 5(?中圖)中的NANOG 染色樣品,觀察到非常相似的表達(dá)模式。需要更長的曝光時間來可視化圖 5(下圖)所示的 2D 樣品中的 SOX2 表達(dá)。除了多能標(biāo)記物的表達(dá)外,還觀察到 GelMA+LN521 中細(xì)胞簇的環(huán)狀形態(tài),主要是在Matrigel 中。這些空心簇類似于神經(jīng)玫瑰花結(jié)或早期中胚層結(jié)構(gòu)(Muratore,2014)。然而,需要進一步分析以確認(rèn)任何潛在的分化,因為iPSC 在觀察到細(xì)胞聚集的所有條件下都保留了 OCT4 和 NANOG 的表達(dá)。這些多能性標(biāo)記物不是所有分化命運的泛阻遏物,而是每個控制向特定譜系的分化。例如,NANOG 抑制胚胎外胚層分化而對其他譜系幾乎沒有影響,而SOX2 抑制中內(nèi)胚層分化(Wang,2012)。轉(zhuǎn)錄因子小心翼翼地相互作用以將細(xì)胞保持在多能狀態(tài),與其他因子相比, 一種因子表達(dá)的微小變化可導(dǎo)致分化
(Rizzino,2016 年)。免疫熒光觀察到的微小變化不是定量的,但表明即使在嵌入和 3D 生物打印后仍保留了多能性標(biāo)記,為 3D 生物打印過程后的分化開辟了新的機會。
圖 5. 2D 培養(yǎng) 4 天和 3D Matrigel 或GelMA+LN521 培養(yǎng) 7 天后 iPSC 中的OCT4、NANOG 和 SOX2 表達(dá)。 所有圖像均使用相同的采集參數(shù)捕獲,但SOX2 的 2D 圖像已為可視化進行了增強。 比例尺 = 100 μm。
與二維細(xì)胞培養(yǎng)相比,3D生物打印顯示出多種優(yōu)勢,包括多細(xì)胞結(jié)構(gòu)的精確幾何排列,可以更好地再現(xiàn)自然的三維人體生理學(xué)。細(xì)胞根據(jù)來自周圍細(xì)胞和環(huán)境的外部信號進行自組裝。這一重要現(xiàn)象有助于理解胚 ??胎發(fā)生、血管生成、傷口愈合和腫瘤形成,也可能有助于開發(fā)新的生物人工器官血管化藥物和途徑。這項 ??研究得出以下結(jié)論:
參考文獻
the formation of microcapillary-like structures on three-dimensional porous biomaterials. Biomaterials. 2007; 28(27): 3965–3976. DOI:10.1016/j.biomaterials.2007.05.032.